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Is Thorny Olive Invasive - Aprenda a controlar oliveiras espinhosas

Is Thorny Olive Invasive - Aprenda a controlar oliveiras espinhosas


Por: Liz Baessler

Elaeagnus pungens, mais comumente conhecida como azeitona espinhosa, é uma planta grande, espinhosa e de crescimento rápido que é invasiva em algumas partes dos Estados Unidos e difícil de eliminar em muitas outras. Nativa do Japão, a oliveira espinhosa cresce como um arbusto e ocasionalmente como uma trepadeira que atinge de 1 a 8 metros de altura.

O controle da oliveira espinhosa pode ser difícil por causa dos espinhos longos e afiados que brotam de seus galhos e da disseminação de sementes de seus frutos. Continue lendo para aprender mais fatos sobre Elaeagnus pungens e como controlar oliveiras espinhosas.

A azeitona espinhosa é invasiva?

Onde a oliveira espinhosa é invasiva? Sim, no Tennessee e na Virgínia, mas também é um incômodo em muitos outros estados. É resistente nas zonas 6 a 10 do USDA e se espalha facilmente através dos excrementos dos pássaros que comeram seus frutos.

Também é muito tolerante à seca, sombra, sal e poluição, o que significa que vai brotar em todos os tipos de espaços e muitas vezes atrapalhará as plantas nativas. A azeitona espinhosa tem o seu lugar e é muito eficaz como barreira, mas devido à sua tendência para se espalhar, muitas vezes não vale a pena.

Como controlar oliveiras espinhosas

O manejo de oliveiras com espinhos funciona melhor com uma combinação de remoção manual seguida de aplicação de produtos químicos. Se sua planta for grande e estável, você pode precisar de uma motosserra ou pelo menos um corta-sebes para cortá-la rente ao solo.

Você pode desenterrar a raiz ou, para um tempo mais fácil, pulverizar as pontas expostas dos tocos com uma solução herbicida forte. Quando os tocos começarem a crescer, pulverize-os novamente.

A melhor época para fazer o controle da azeitona espinhosa é antes dos frutos da planta, no outono, para evitar a propagação das sementes.

Observação: O controle químico deve ser usado apenas como último recurso, pois as abordagens orgânicas são mais seguras e muito mais amigáveis ​​ao meio ambiente.

Este artigo foi atualizado pela última vez em


Como podar arbustos de bagas de prata

Se você tiver um matagal de bagas prateadas indisciplinado, pode cortá-lo até o solo e permitir que ele se regenere. Arbustos de baga prateada irão crescer novamente de suas raízes.

Se você deseja cultivar arbustos de frutas prateadas, mas não quer lidar com os rebentos, plante os arbustos onde eles recebam apenas seis horas de sol direto por dia em solo arenoso ou argiloso não aprimorado. Isso limitará o crescimento dos arbustos, ao mesmo tempo que permite que você aprecie suas flores perfumadas e frutas e folhagens incomuns.

Plante arbustos de bagas de prata em aterros e permita que atuem como controle da erosão. Suas habilidades de formação de matagais terão margens e encostas cobertas em dois a três anos.

Arbustos de bagas de prata podem ser invasivos se deixados por conta própria.

Os arbustos de bagas de prata não requerem poda para estimular a floração ou a frutificação. Na verdade, eles só precisam de poda o suficiente para manter seu crescimento sob controle.

Arbustos de bagas de prata são atraentes para veados e outros grandes herbívoros. Você pode usar esses arbustos como plantas chamariz para manter os veados longe do resto do seu jardim; no entanto, os arbustos de bagas de prata continuarão a atrair veados que, eventualmente, passarão a saquear o resto do seu jardim.

Silver berry é o nome comum de algumas espécies elaeagnus. Elaeagnus commutata é o único arbusto de baga prateado nativo da América do Norte. Elaeagnus pungens, também chamada de baga prateada espinhosa, é o arbusto mais freqüentemente encontrado em jardins. Ambos os arbustos de bagas prateadas têm folhas verdes pálidas cobertas por escamas prateadas difusas. E. commutata tem verdadeiras bagas prateadas ou esbranquiçadas, enquanto e. pungens tem bagas vermelhas cobertas com manchas prateadas (ou bagas prateadas cobertas com manchas vermelhas) e espinhos de 5 a 7 centímetros de comprimento. Os arbustos de bagas de prata formam matagais, o que os torna ideais para o controle da erosão e sebes ou plantações de vida selvagem. Arbustos de bagas de prata plantados como plantas ornamentais precisarão de poda pelo menos a cada dois anos para manter seu crescimento exuberante sob controle.

  • Silver berry é o nome comum de algumas espécies elaeagnus.
  • Elaeagnus commutata é o único arbusto de baga prateado nativo da América do Norte.

Pode podar os arbustos de bagas de prata para manter a forma e o tamanho enquanto estão dormentes. Você pode fazer isso no final do inverno / início da primavera ou no final do outono após a queda das folhas. Use camisas de mangas compridas e luvas ao podar, pois alguns arbustos de bagas de prata têm espinhos longos.

Use tesouras de poda para remover galhos quebrados logo acima de um botão forte (o lugar onde as folhas emergem)

Remova os galhos que cresçam no interior do arbusto ou que estejam se esfregando em outros galhos. No caso de dois ramos esfregando um no outro, remova o ramo menor (ou mais fraco). Use tesouras de poda para ramos com menos de 1/4 de polegada de diâmetro e serras de poda para ramos de diâmetro maior.

  • Pode podar os arbustos de bagas de prata para manter a forma e o tamanho enquanto estão dormentes.
  • Use uma tesoura de poda para remover os galhos quebrados logo acima de um botão forte (o local onde as folhas emergem). Remova os galhos que crescem no interior do arbusto ou que estão se esfregando em outros galhos.

Modele o arbusto prateado cortando o crescimento irregular (crescimento que é mais longo em um lado ou em uma área). Faça cortes acima de botões ou galhos fortes. Você pode remover 1/2 dos galhos dos arbustos de bagas de prata sem afetar o crescimento, embora você possa ter menos flores e frutos produzidos naquele ano.

Remova os rebentos (brotos que brotam das raízes da planta-mãe) com uma pá afiada. Enfie a pá de 7 a 10 cm no solo entre a ventosa e o arbusto-mãe. Isso corta a haste que conecta os dois. Coloque a pá o mais próximo possível da base da ventosa. Insira a pá em um ângulo de 45 graus sob a base da ventosa e aplique pressão para cima. Deve saltar do chão. Se o sugador for teimoso, você pode ter que cortar as raízes do lado oposto.

  • Modele o arbusto prateado cortando o crescimento irregular (crescimento que é mais longo em um lado ou em uma área).
  • Enfie a pá de 7 a 10 cm no solo entre a ventosa e o arbusto-mãe.

Remova galhos mortos em qualquer época do ano. Faça cortes de 2 a 3 polegadas em madeira saudável e 1/2 polegada acima de um botão ou galho forte.


Os arbustos perenes descritos abaixo da beira-mar

Os arbustos descritos abaixo podem ser considerados os elementos de 'estrutura', os elementos que se encaixam na planta 'esqueleto'do jardim à beira-mar. Neste 'esqueleto' podem ser adicionadas as plantas restantes que irão compor os conjuntos de plantas individuais do jardim ou área de plantio. A maioria desses arbustos perenes são adequados para exposição costeira direta plantio.

A Lista de Plantas

  • Atriplex halimus (erva-sal do Mediterrâneo)
  • Brachyglottis greyi (Daisy Bush)
  • Callistemon citrinus (escova de garrafas carmesim)
  • Carissa macrocarpa (Natal Plum)
  • Cistus creticus (rosa-rocha)
  • Coprosma repens (Mirror Bush)
  • Elaeagnus pungens (azeitona espinhosa)
  • Elaeagnus x ebbingei (amora silvestre de Ebbing)
  • Escallonia rosea (Escallonia)
  • Escallonia rubra (Escallonia Vermelha)
  • Euonymous fortunei (Fortune's Spindle)
  • Euonymus japonicus (Evergreen Spindle)
  • Euryops pectinatus (Euryops com folhas cinzentas)
  • Fuchsia magellanica (Hardy Fuchsia)
  • Grevillea aquifolium (Holly Grevillea)
  • Laurus nobilis (louro)
  • Leptospermum laevigatum (árvore do chá da costa)
  • Lonicera nitida (Box Honeysuckle)
  • Lonicera pileata (madressilva com folhas de caixa)
  • Melaleuca nesophila (mel-murta vistosa)
  • Myoporum insulare (Boobialla comum)
  • Nerium oleander (Oleander)
  • Olearia traversii (Chatham Island Akeake)
  • Pistacia lentiscus (árvore de mástique)
  • Pittosporum tenuifolium (Kohuhu)
  • Pittosporum tobira (Cheesewood japonês)
  • Polygala myrtifolia (Myrtle-Leaf Milkwort)
  • Pyrachantha coccinea (Red Firethorn)
  • Rhaphiolepis umbellata (Yeddo Hawthorn)
  • Westringia fruticosa (alecrim costeiro)

Arbustos perenes para áreas costeiras


Tobira

Tobira, também conhecido como pittosporum japonês (Pittosporum tobira), cresce rapidamente até 2,5 a 3 metros, e então sua taxa de crescimento diminui. Sua altura final é entre 8 e 12 pés e sua extensão é de 12 a 18 pés, o que o torna um bom quebra-vento. Ele carrega flores branco-creme com um perfume adocicado, desde o início até o meio da primavera, se não for podado. Você pode plantar esta árvore em áreas costeiras e propensas a secas e ela é resistente na zona 8 do USDA. Ela precisa de solo bem drenado e rega regular enquanto jovem.


PLANTAS QUE PRODUZEM BAGAS BLUEBIRDS VÃO COMER

Nota: Estou procurando uma confirmação - se você testemunhou pássaros azuis comendo bagas de uma planta listada abaixo com um "?" depois disso, entre em contato comigo. As plantas destacadas em amarelo (com um "#" após o nome comum são consideradas invasoras em algumas / todas as áreas e nunca devem ser plantadas.

Este site concentra-se em pássaros azuis orientais (Sialia sialis) Veja abaixo as plantas que Bluebirds ocidentais (Sialia mexicana) pode favorecer. Bluebirds ocidentais ainda estão em declínio, então essas fontes naturais de alimentos nativos são particularmente críticas.

* Bluebirds também comem hera venenosa (Rhus radicans), e carvalho venenoso (Toxidendron diversilobum) bagas, que são brancas.

Eles não parecem gostar Nandina doméstica (Bambu celestial, não nativo) - um jovem foi testemunhado tentando cuspir a fruta.

Depois que a pele está quebrada, os pássaros azuis bicarão e comerão maçãs, peras, figos, bing, cerejas doces e azedas e todos os tipos de uvas. Os pássaros azuis também se alimentam de nozes, nozes, castanhas, nozes-pecãs, nozes, nozes de porco e outras nozes quando outras aves, animais ou carros esmagam as cascas para que possam chegar à carne.

Bluebirds ocidentais podem comer bagas do seguinte ([c] = confirmado). Muitas dessas plantas são tolerantes à seca. O líquido nas frutas de plantas como a Lemonadeberry pode ser tão importante para as aves do sudoeste durante os meses quentes de verão quanto as frutas de alto teor calórico são para as aves orientais durante o inverno.

  • Baja Bird Bush (Ornithostaphylos oppositifolia)
  • Artemísia (Artemisia tridentata)
  • Amoras e framboesas (Rubus spp.) [c]
  • California Fan Palm (Washingtonia filifera) - fibras também usadas para material de aninhamento [c]
  • Peppertree (peruana) da Califórnia (Schinus molle) - baga rosa dura. Pode ser comida de último recurso. Não nativo. Precisa masculino e feminino. [c]
  • Cascara (sementes) (Rhammus Purshiana) [c]
  • Chokecherries (Prunus virginiana) [c]
  • Coffeeberry (Rhamnus californica)
  • Coralberry (Symphoricarpos orbiculatus)
  • Groselha (Ribes spp.) [c]
  • Dock (Rumex spp.) [c]
  • Visco anão (Arceuthobium pusillum)
  • Dwarf sumagre (Rhus copallina) [c]
  • Sabugueiro
    • blackbead (Sambucus melanocarpa)
    • Azul (Sambucus caerulea - áreas secas) [c]
    • mexicano (Sambucus mexicanus) [c]
    • Pacific Red (Sambucus callicarpa)
  • Figs (Ficus spp.) [c]
  • Uvas (Vitus spp.) [c]
  • Juniper (Juniperus) [c]
  • Hollyleaf Cherry (Prunus ilicifolia)
  • Lantana (Lantana sp.)
  • Laurel sumagre (Rhus Laurina)
  • LimonadaRhus integrifolia) [c]
  • Visco spp., Carvalho (por exemplo, Phoradendron coryae) [c] - observou água potável repetidamente durante a alimentação de Bob Schmalzel em Tucson
  • Nightshade (Solanum spp.) [c]
  • Redberry (Rhamnus crocea e Rhamnus ilicifolia) [c]
  • Serviceberry (Amelanchier alnifolia) [c]
  • Uva Oregon (Mahonia aquifolium) [c]
  • Madrone do Pacífico (Arbutus menziesii)
  • Árvore de pimenta (Schinus molle) [c]
  • Poison Oak (Rhus diversiloba) [c]
  • Ameixas e cerejas (Prunus spp.) [c]
  • Smartweed (Polygonus spp.) [c]
  • Toyon / Christmas Berry (Heteromeles arbutifolia) [c]
  • Rosa Selvagem (Rosa Woodsii)

Além das fontes de frutas, você pode adicionar plantas nativas que suportam insetos e lagartas comestíveis, como Coffeeberry, California Aster, Ceanothus, Baja Fairy Duster e Sticky Monkeyflower.

Fontes e links para mais informações:

  • Vídeo interessante de alta qualidade de pássaros azuis pendurados em uma caixa de ninho, hackberry hackberry seed, iwishicouldfly.com
  • Bluebird Listserv - O melhor dos classificados
  • Paisagismo de conservação - dicas da National Audubon Society
  • Bagas de Dogwood - coleta, alimentação, pedidos (Finch Homes for Bluebirds). As frutas conservam-se bem por cerca de um mês quando armazenadas em local fresco e seco.
  • Árvores frutíferas favoritas para a vida selvagem - Little Tchefunct Wildlife Habitat
  • Plantando para a Vida Selvagem
  • Links para sociedades de plantas nativas, etc.
  • Enjoying Bluebirds More, The Bluebird Landlord's Handbook, J. Zickefoose
  • Bluebirds Across Nebraska - Plantas produtoras de frutas vermelhas que atraem bluebirds
  • The Bluebird Monitor's Guide, C. Berger, K. Kridler, J. Griggs
  • Bluebirds Forever, C. Toops
  • Plantas invasivas - ornamentais fora de controle
  • Invasive.org - Centro para Espécies Invasivas e Saúde de Ecossistemas
  • Índice de nomes comuns de plantas
  • Lista da Plant Conservation Alliance de plantas invasoras (por nome, mostra os estados)
  • Stokes Bluebird Book, Donald e Lillian Stokes
  • Banco de dados de plantas do USDA
  • Plantas do sul para atrair pássaros (Colina do Beija-flor)

Que todos os seus blues sejam pássaros!

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Última atualização em 22 de março de 2017. Design por Chimalis.


Se você quer um visual mais tropical para o seu paisagismo, você tem muitas opções. Você ainda precisará levar em consideração quais tipos são tolerantes à sombra e quais plantas precisam de sol, dependendo das condições da área que deseja plantar.

As palmeiras são a adição mais óbvia para transformar sua propriedade em um oásis tropical. Quer seja um grande Sabal Palmetto ou um pequeno Saw Palmetto, essas plantas são adaptadas para florescer nas áreas costeiras.

Gramíneas ornamentais como o Sand Cordgrass funcionam bem ao longo da costa quando combinadas com Oleander, Buganvílias e algumas das plantas perenes abaixo. Uma combinação dessas plantas pode ajudá-lo a criar um refúgio bem tropical.

As plantas perenes tropicais que se dão bem na praia incluem:

  • Wright’s Texas Firecracker (Anisacanthus wrightii)
  • Serralha roxa (Asclepias purpurascens)
  • Fábrica de ferro fundido (Aspidistra elatior)
  • Várias trombetas de anjo (Brugmansia) variedades, incluindo "Betty Marshall", "Double White", "Charles Grimaldi", "Cherub", "Snowbank", "Sunset", "Intrigue", "Lemon Punch", "Minerva", "Orange Punch" e "Pacific Beleza"
  • Vários Canna (Canna x Generalis) variedades, como “Tigre de Bengala”, “Blueberry Sparkler”, “Chocolate Sunrise”, “Ermine”, “Flaming Kabobs”, “Phasion” e “Pink Sunburst”
  • Louisiana Canna (Canna glauca), especificamente as variedades "Karin" e "Panache"
  • O lírio-cana selvagem “Red Stripe” (Canna indica)
  • Diversas variedades de lírio crinum (Crinum americanum), incluindo "Elizabeth Traub", "Ellen Bosanquet", "Infusion", "Li'l Stinker", "Parfait", "Perséfone", "Peyton's Place", "Pink Trumpet", "Sangria", "Super Ellen" e “Wading Pool”
  • A espécie “Schreck” de leite e lírio de vinho (Crinum x Herbertii)
  • King’s Cross (Dicliptera suberecta)
  • Quatro variedades de flor de guirlanda (Hedychium coronarium) (“Anne Bishop”, “Daniel Weeks”, “Kin Ogi” e “Vanilla Ice”)
  • Tipos de Scarlet Ginger Lily “Applecourt” e “Slim’s Orange” (Hedychium coccineum)
  • Variedade “Bandeiras de Oração” de Kahili Ginger (Hedychium urophyllum)
  • Tipo “vermelho de Anna” de rosa quaresmal (Helleborus orientalis)
  • Versão “Red Silver” de Stinking hellebore (Helleborus foetidus)
  • Mais de uma dúzia de Hellebore (Helleborus x hubridus) variedades
  • Four Day Lily (Hemerocallis) variedades: “August Flame”, “Autumn Minaret”, “Freewheelin’ ”e“ Steeple Jackie ”
  • Iúca vermelha (Hesperaloe parviflora)
  • "Swamp Angel", "Cranberry Crush", "Fantasia", "Fireball", "Heartthrob" e "Midnight Marvel" Texas star hibiscus (Hibiscus coccineus) variedades
  • China rosa (Hibiscus rosa-sinensis) variedades, incluindo “Raspberry Rose”, “Flora Plena”, “Peppermint Flare”, “Robert Fleming” e “Summer Storm”
  • Variedade “Voodoo” de Amaryllis lily (Hippeastrum puniceum)
  • Uma dúzia de variedades Hosta
  • Tipos “Dick Weaver” e “Dunbar Creek” de Garden phlox (Phlox Paniculata) variedades
  • Variedade “chi chi” da petúnia mexicana (Ruellia brittoniana)
  • A ruélia vermelha “Ragin’ Cajun ” (Ruellia elegans)
  • O tipo “Amistad” de Sábio (Salvia)
  • Sábio azul feio (Salvia farinacea)
  • Sábio de outono (Salvia greggii)
  • Palma do moinho de vento chinês (Trachycarpus fortunei)
  • Lírio da chuva de agosto (Zephyranthes candida)

Outra opção é usar recipientes para o seu paisagismo para que você possa trazer essas plantas para dentro e controlar a salinidade do solo. Usando essa abordagem, você pode ter a flexibilidade de usar alternativas com menor tolerância ao sal para quais espécies podem funcionar bem em outras áreas. Você também pode alterar a salinidade do solo ou construir uma cerca ou outra barreira para ajudar a proteger as plantas e aumentar a variedade de plantas que você pode escolher para sua casa à beira-mar.


CONSIDERAÇÕES DE GESTÃO

A azeitona-russa tem sido promovida para plantações para beneficiar a vida selvagem porque produz frutas abundantes e comestíveis, e vários pássaros e mamíferos nativos foram relatados para usar a azeitona-russa para alimentação, nidificação e cobertura [10,16,43,77,106,108,140,143,172,175]. Borell [16] relata que mais de 50 tipos de pássaros e mamíferos comem a fruta da azeitona-russa. Destes, 12 são aves de caça, incluindo faisão-de-pescoço-redondo, perdiz, pato-real, codorniz, peru selvagem e pomba-do-luto. A maioria dos pássaros engole o fruto inteiro, enquanto alguns bicam a polpa da semente. As sementes que brotam no solo na primavera também são facilmente comidas. Outros animais selvagens conhecidos por comerem frutas da azeitona russa incluem o coelho, o esquilo-raposa, o esquilo-terrestre, o alce e o veado [16]. Os esquilos também comem casca de azeitona russa e ramos jovens [172]. Os esquilos de bolso ocasionalmente se alimentam tanto das raízes das árvores jovens que as árvores morrem. Os roedores raramente danificam a casca ou raízes de árvores maduras [16]. A granivoria por mamíferos generalistas (principalmente camundongos domésticos e camundongos veados) impediu completamente a germinação de sementes de azeitona russa fora de exclusões de pequenos mamíferos em parcelas de estudo no Colorado [95]. Listas de espécies observadas usando áreas ribeirinhas e terras altas nativas da oliveira russa são fornecidas por Knopf e Olson [103].

Embora se diga que a azeitona russa fornece néctar para as abelhas (Hayes 1976, conforme citado por [96]), as revisões sugerem que os insetos são encontrados apenas em baixas densidades na azeitona russa [16,96,177], e que a fruta não é consumida por insetos [191]. Dix e outros [54] sugerem que os gafanhotos às vezes consomem folhas de árvores jovens, bem como a parte carnuda da fruta.

Foi sugerido que, embora a azeitona-russa possa melhorar o habitat da vida selvagem para algumas espécies, ela é menos usada do que a vegetação nativa [52]. Isso pode ter maiores impactos sobre espécies como ninhos em cavidades e pássaros insetívoros em locais onde a oliveira-russa substitui o choupo e o salgueiro anteriormente dominantes (veja Impactos e Sucessão). Além disso, castores nativos raramente colhem oliveiras russas, e a severidade dos danos aos castores foi baixa em comparação com a mortalidade e os danos infligidos aos choupos de planícies nativas nos rios Marias [111], Yellowstone inferior, Bighorn [113] e Leite [140] ] em Montana.

Palatabilidade / valor nutricional: Hansen e outros [81] classificam a palatabilidade da azeitona russa como pobre para gado, ovelhas domésticas e cavalos com valores moderados de energia e proteína. Eles classificam o valor alimentar ou o grau de uso como razoável para alces, veados-de-cauda-branca e pobre para veados-mula e bom para aves de caça de terras altas, aves aquáticas, pequenos pássaros não-gêmeas e pequenos mamíferos [81].

A palatabilidade da azeitona russa para o gado e espécies selvagens em vários estados ocidentais foi avaliada por Dittberner e Olson [53] da seguinte forma:

CO MT WL UT WY
Gado Pobre Justo Justo Pobre Pobre
Ovelha Justo Justo Bom Justo Justo
Cavalos Pobre Pobre Pobre Pobre Pobre
Pronghorn ---- Justo ---- Justo Pobre
Alce ---- ---- ---- Bom Justo
Veado-mula ---- Pobre Pobre Bom Bom
Gazela de cauda branca Bom Justo ---- ---- Pobre
Pequenos mamíferos Bom ---- ---- Bom Bom
Pequenos pássaros não-gays Bom Bom Justo Bom Bom
Aves de caça das terras altas ---- Bom Bom Bom Bom
Aves aquáticas ---- ---- ---- Justo Bom

Um estudo das necessidades energéticas nutricionais de perdiz-de-cauda-afiada recomenda a azeitona-russa como boa comida de inverno [62]. Outro relatório diz que a azeitona-russa ajuda a fornecer aos perdizes uma dieta de inverno suficiente para sobreviver às condições do inverno no norte das Grandes Planícies ([63] e referências nele).

A composição próxima sazonal e os constituintes da parede celular (%) das folhas da oliveira russa colhidas no norte do Paquistão são dados da seguinte forma [11]:

Estação matéria seca proteína bruta fibra de detergente neutro fibra de detergente ácido hemicelulose lignina detergente ácido cinzas
Primavera 65.6 14.9 37.5 21.0 16.5 2.5 7.1
Inverno 46.7 13.9 31.0 20.8 10.2 5.8 11.8

Valor da capa: De acordo com Borell [16], a oliveira-russa tem galhos espinhosos e espinhosos e vegetação formadora de matagais que proporcionam excelente cobertura para a vida selvagem. Diz-se que as pombas-do-luto, os pássaros escarpins, os roadrunners e vários outros tipos de pássaros usam a oliveira-russa para nidificar [16]. De acordo com Stubbendieck e outros [172], a azeitona-russa fornece cobertura de inverno para faisões de pescoço anelado e locais de nidificação para pombos de luto e pássaros canoros nas Grandes Planícies. Alguns locais de nidificação de papa-moscas de salgueiro do sudoeste são encontrados em habitats ribeirinhos dominados por áreas quase monotípicas de tamargueiras e oliveiras-russas no sudoeste [188].

Hansen e outros [81] classificam o valor térmico ou de cobertura alimentar da azeitona russa como razoável (moderadamente usado para cobertura quando disponível) para alces e veados-mula, e bom (prontamente utilizado para cobertura quando disponível) para cervos de cauda branca em Montana. Eles classificam o valor térmico ou de cobertura alimentar como bom para aves de caça de terras altas e pequenas aves não gêmeas, e justo para aves aquáticas e pequenos mamíferos [81].

OUTROS USOS:
A azeitona russa tem sido promovida para muitos usos, incluindo, por exemplo, quebra-ventos e controle de erosão [41,71,72,84] armadilhas de neve [158] riachos e plantações de riachos sebes e cercas vivas atraindo vida selvagem [38,41,77,84 ] plantações ornamentais e paisagísticas [39] e néctar para abelhas (Hayes 1976, citado por [96]). Tem sido usado como uma cultura de enfermagem para noz preta (Juglans nigra) devido à sua capacidade de fixação de nitrogênio [48]. A azeitona russa foi plantada em resíduos de mina recuperados no centro e leste dos EUA [24,144,193], Wyoming [90] e Califórnia [31]. É plantado em áreas costeiras devido à sua capacidade de resistir à névoa salina do oceano e à deposição de areia levada pelo vento (Morehart et al 1980, conforme citado por [96]). A azeitona russa foi usada como parte de uma mistura de sementes introduzida em um estudo de técnicas de revegetação em uma grande comunidade de artemísia perturbada no noroeste do Colorado em 1976 [132]. A azeitona russa foi declarada uma erva daninha nociva no Colorado [189].

Agências públicas e privadas continuaram a defender o plantio de azeitonas russas para quebra-ventos e outros fins hortícolas. Recentemente, nas décadas de 1980 e 1990, muitas agências estaduais e federais estavam subsidiando a distribuição de mudas de azeitona russa no oeste dos Estados Unidos e Canadá [78,137]. Além disso, recomendações de plantio e fornecedores de mudas como as de Borell [16] são frequentemente encontradas na literatura. A azeitona-russa estava entre as espécies de árvores mais populares oferecidas por viveiros nos Estados Unidos de 1980 a 1986, e era especialmente popular nas regiões centro-norte e oeste. Sua popularidade diminuiu significativamente (teste do qui-quadrado, alfa = 0,05) na região centro-norte entre 1980 e 1986. As razões para a popularidade diminuída não são fornecidas ou especuladas [133].

O interesse continuado da horticultura na azeitona russa é evidenciado por pesquisas recentes abordando tópicos como a regulação química do crescimento da azeitona russa em viveiros para manter uma forma compacta, resistência a herbicidas de mudas de azeitona russa, tratamentos que facilitam o enraizamento em mudas de azeitona russa, e métodos de propagação da oliveira russa a partir de segmentos de folhas e segmentos de rebentos ([96] e referências neles).

Descobriu-se que as folhas da oliveira russa são um biomonitor preciso para chumbo, cádmio e zinco em solos contaminados com metais pesados ​​na Turquia. As concentrações de metais pesados ​​nas folhas estão bem correlacionadas com as concentrações de metais pesados ​​nos solos superficiais [3].

Uma pesquisa bibliográfica indica várias referências que sugerem propriedades medicinais da azeitona-russa, no entanto, esse tópico está além do escopo desta revisão.

Produtos de madeira: A madeira de oliveira russa é um bom combustível e bons postes de vedação [16].

IMPACTOS E CONTROLE:
Impactos: Há evidências empíricas variadas e um tanto limitadas disponíveis que demonstram os impactos da azeitona-russa sobre os ecossistemas nativos na América do Norte. No entanto, algumas evidências sugerem que a oliveira-russa substitui a vegetação nativa, alterando a estrutura da vegetação e reduzindo o habitat da vida selvagem para algumas espécies. Além disso, alguns autores sugeriram que a azeitona-russa pode alterar a hidrologia do riacho e o ciclo de nutrientes [180], embora isso não tenha sido testado em ambientes naturais.

A azeitona russa é frequentemente invasiva em áreas ribeirinhas, que são frequentemente afetadas por uma infinidade de distúrbios induzidos pelo homem. "As funções do ecossistema ribeirinho foram alteradas, reduzidas ou perdidas entre os efeitos em cascata das ações de gestão dos rios em muitos rios ocidentais. Como os ecossistemas são complexos e repletos de fatores de confusão interconectados, pode ser difícil quantificar as perdas e funções, e classificar causas e efeitos. Os invasores ribeirinhos não nativos parecem ser um único sintoma ou faceta de um problema complexo de alocação de recursos sistêmicos "[171].

Classificações: Diversas agências e organizações classificam o azeite russo como invasor em vários graus. O USDA, Forest Service, Eastern Region classifica a azeitona russa como "altamente invasiva" (plantas não nativas que invadem habitats naturais e substituem espécies nativas), com base em informações de listas, botânicos e ecologistas de 15 dos 20 estados daquela região [ 183]. Por outro lado, a azeitona russa é classificada como uma "espécie ocasionalmente invasora" (plantas que geralmente não afetam os processos do ecossistema, mas podem alterar a composição da comunidade vegetal ao superar uma ou mais espécies de plantas nativas) pelo Departamento de Conservação e Recreação da Virgínia. Estas são plantas que muitas vezes se estabelecem em áreas severamente perturbadas por eventos como tempestades de gelo, vento ou construção de estradas, e se espalham lentamente ou não se espalham a partir de locais perturbados [192]. A azeitona russa é classificada como uma "espécie de categoria 2" (espécies de plantas não nativas que são suspeitas de serem invasoras ou são conhecidas por serem invasoras em áreas limitadas da Região Sul) pela Região Sul do Serviço Florestal dos EUA, conforme relatado pelo Conselho de Plantas Exóticas do Sudeste. As espécies da categoria 2 irão persistir no meio ambiente por longos períodos uma vez estabelecidas e podem se tornar invasoras em condições favoráveis, representando assim um risco potencial para a integridade das comunidades de plantas naturais em partes da região [184]. O Conselho de Plantas Invasivas da Califórnia (Cal-IPC) relaciona a oliveira-russa entre as plantas de pragas selvagens mais invasivas da Califórnia. Estes são "documentados como invasores agressivos que deslocam os nativos e perturbam os habitats naturais" [32]. No entanto, não há informações na literatura descrevendo especificamente as distribuições e impactos da azeitona russa na Califórnia. Em um determinado local, a azeitona-russa pode estar presente como indivíduos dispersos, em copas de várias espécies ou em povoamentos monotípicos [96]. Diz-se que a oliveira russa desloca e / ou tem o potencial de deslocar espécies nativas do clímax em muitas partes do oeste dos EUA, como a drenagem do rio Platte de Nebraska [47] e outras planícies aluviais do rio da pradaria [140] pântanos em Dakota do Sul [137 ] a Bacia do Rio Grande no Novo México [33,91,123,128], e outras drenagens de rio no sudoeste [128].

Várias características dão à azeitona russa uma vantagem nas comunidades que ela invade, incluindo alta produção e viabilidade de sementes, longevidade de sementes, dispersão de sementes por pássaros e mamíferos, reprodução vegetativa após ferimentos, seca e tolerância ao sal, e a capacidade de se estabelecer na ausência de perturbação em comunidades sucessionais tardias (ver Características botânicas e ecológicas). Essas características permitem que a oliveira-russa substitua algumas espécies ribeirinhas nativas dominantes que não podem mais germinar, estabelecer e persistir sob as condições impostas pelo represamento do rio (por exemplo, aumento da salinidade, redução das inundações e declínios do lençol freático) e outros impactos do desenvolvimento humano [ 4,19,45,64,81,91,111,112,113,123]. Árvores ribeirinhas nativas tendem a ser pioneiras, dependentes de distúrbios físicos para o recrutamento [23,96,156]. A regulação do fluxo, resultando em picos de inundação reduzidos e taxa de acréscimo de barra de pontos, além de desmatamento, pastagem de gado, corte de castores, dano de gelo e fogo, juntamente com invasões de espécies não nativas, estão todos implicados no declínio da vegetação lenhosa nativa em ecossistemas ribeirinhos no oeste dos EUA [30,61,67,134,160,171,174]. Essas mesmas condições de local e processos que levam ao declínio de espécies nativas simultaneamente fornecem condições de local ideais para o estabelecimento da oliveira russa e eventual domínio [50.111.112.140.156.188]. A azeitona-russa é uma causa parcial e um sintoma do declínio das espécies nativas [91].

Uma vez estabelecida, a azeitona-russa pode impedir ainda mais o recrutamento de choupo e salgueiro nativos em alguns locais [47,112]. Por exemplo, onde a azeitona-russa ocorre como um importante componente de sub-bosque ao longo do Rio Grande, de Espanola ao sul de Belen, Novo México, ela continuará a se espalhar pela floresta, contribuindo para a estabilização das margens do rio contra inundações futuras, e assim limitar ainda mais as oportunidades para a regeneração do algodão [91]. Da mesma forma, em uma comparação entre o rio Yellowstone de fluxo livre e o rio Marias regulado pelo fluxo no leste de Montana, Lesica e Miles [111,112,113] descobriram que o estabelecimento do choupo e o domínio não foram impedidos pela oliveira-russa no curso superior do rio Yellowstone, onde inundações e desenvolvimento de novos canais criam continuamente um novo habitat para o estabelecimento de choupo. No entanto, o choupo pode eventualmente ser substituído por oliveira-russa no rio Marias, pois choupos velhos morrem nos terraços superiores e os choupos jovens em terraços baixos são removidos por castores ou gado ou sombreados por espécies menos palatáveis ​​[111,112,113].

A dominância da azeitona russa pode levar ainda mais à redução da diversidade de espécies. Os plantios de oliveiras russas tendem a ser menos diversificados estrutural e composicionalmente do que as comunidades vizinhas [91,128]. Em Montana, por exemplo, a colonização não perturbada e comunidades estabelecidas de choupo suportam até 114 e 58 espécies de plantas, respectivamente, em comparação com apenas 29 espécies em plantações de oliveiras russas [81.140]. A diversidade estrutural e composicional de plantas alterada pode levar a uma menor diversidade da vida selvagem.

Animais selvagens: O impacto das invasões da oliveira russa sobre as espécies selvagens é variável, específico do local e frequentemente debatido. Consulte também a seção Importância para o gado e a vida selvagem deste relatório. Anecdotal evidence and observations by managers suggest that several species may be affected by Russian-olive invasion, although in some cases it is unclear whether impacts are caused by Russian-olive itself, or by changes in the ecosystem as a whole. Although Russian-olive has been promoted for use in wildlife habitat plantings, there has been relatively little research on its use by native animals [96].

Knopf and Olson [103] suggest that naturalization of Russian-olive on floodplains in the Rocky Mountains has provided additional wildlife habitat between riparian cottonwood forests and adjacent grass-dominated uplands. In some cases Russian-olive may provide important structural habitat for wildlife species by forming an intermediate-height canopy layer that is lacking in some native riparian forest communities. It may also increase the spatial extent of woody habitat by establishing on the outer edge of native riparian forests, providing additional habitats, especially for those avian species that are associated with tall shrub vegetation. Bird species richness and alpha diversity in monotypic Russian-olive stands were intermediate to those of native riparian and native upland vegetation types in Colorado, Idaho and Utah [103]. However, in some cases Russian-olive forms dense, monotypic stands that replace native communities on floodplains (see above), thus altering and potentially reducing habitat options for wildlife [91,137,140]. Some authors suggest that the displacement of native floodplain forest by Russian-olive can result in loss of habitat for species such as cavity-nesting and insectivorous birds [25,103,112,137,168].

Some researchers have examined Russian-olive's relative usefulness to wildlife as compared with native plant species it replaces, with mixed results. Several studies indicate that Russian-olive is utilized to varying degrees, and with varying degrees of success, by many avian species along the Rio Grande River [110,204], the Gila River [168], the Columbia River (Hudson 2000, as cited by [168]), and the Snake River [25]. However, results and related inference from several studies indicate avoidance of Russian-olive and/or a preference for native plant species by, for example, primary and secondary cavity nesters [168], neotropical migrants (Hudson 2000, as cited by [168]), greater prairie-chicken ([McCarthy et al 1997] and references therein), ducks [70], and foreign guilds in winter [25]. Additionally, Brown [25] found that species richness, abundance and density were greater in willow than in Russian-olive habitats, and all foraging guilds avoided Russian-olive in the breeding season along the Snake River in Idaho.

Other studies and reports indicate less certainty about the role and/or impacts of Russian-olive for native wildlife species. The threatened southwestern willow flycatcher, for example, nests in native vegetation where available but also nests in thickets dominated by Russian-olive and saltcedar, and individuals of both species are used as nesting substrates ([188] and references therein). High-elevation (>6,200 feet (1,900 m)) breeding sites are typically dominated by native trees and shrubs, although Russian-olive is a major habitat component at some high-elevation breeding sites in New Mexico. From the standpoint of flycatcher productivity and survivorship, the suitability of nonnative-dominated habitats is unknown. Flycatcher productivity is lower in nonnative dominated sites compared with native-dominated sites in some locations, and higher in others. It is unclear whether factors such as patch size may have greater effects on flycatcher productivity at those sites. Details are given in the southwestern willow flycatcher recovery plan [188]. Results presented by Kelly and others [100] and Gazda and others [70] also do not seem to support the conjecture that nonnative shrubs in riparian areas provide lower-quality habitat for birds, and Russian-olive does provide a food source for many birds. The role of Russian-olive in native wildlife habitat is unclear for many species [168,204].

For small mammals, species richness was greater in Russian-olive stands than in the native riparian and upland vegetation types (low species richness, intermediate diversity) in Colorado, Idaho and Utah [103]. Native beavers primarily use cottonwood trees while rarely using Russian-olive or tamarisk along several rivers in eastern Montana [111,112,113]. Thus, beavers create areas of lower competitive stress for Russian-olive by felling dominant cottonwoods. Most beaver damaged cottonwoods were cut off at the base, while damage to Russian-olive was usually confined to 1 or 2 basal limbs. Growth rates of both Russian-olive and tamarisk were substantially higher where beavers had reduced the cottonwood canopy cover. Managers wishing to reintroduce beavers should consider the potential effect on invasive plants it may be best to control invasives before reintroducing beavers [113].

Hydrogeology/Nutrient cycling/Other: Some authors have suggested that Russian-olive influences hydrogeomorphic processes, for example by increasing floodplain roughness in habitats where woody vegetation would otherwise not occur (Tickner et al 2001, as cited by [96]), and contributing to stabilization of riverbanks against flooding [91]. There is not, however, literature available that addresses this issue.

As a nitrogen-fixing plant species, Russian-olive has high leaf nitrogen content [153], and leaves and leaf litter of Russian-olive tend to have higher nitrogen content than native species in the communities it invades. Thus, Russian-olive may contribute substantial amounts of additional nitrogen to invaded ecosystems ([96] and references therein). Nodular nitrogenase activity in Russian-olive varies with season and site conditions [206], thus the impacts of an Russian-olive as a novel N-fixing plant in some communities probably also vary. Royer and others [153] found slow processing rates of Russian-olive leaves (compared to natives) in some Idaho streams, and suggested that slowed litter processing might alter local and downstream aquatic communities. However, studies of degradation rates of Russian-olive leaf litter have been inconclusive regarding system nitrogen inputs. So, while invasion by Russian-olive may affect ecosystem nutrient levels, no studies have yet demonstrated this in invaded communities [96].

There is little quantitative information on the historic and present-day spread of Russian-olive, ecological factors that may limit the geographical range of Russian-olive, or its potential for range expansion in western North America. Lesica and Miles [112] approximate a 10-year lag before newly established Russian-olive individuals become reproductively mature in eastern Montana, and Katz and Shafroth [96] suggest inherently slow rates of spatial spread for species such as Russian-olive that possess relatively large, primarily vertebrate-dispersed seed. There is also no published information on competition or facilitation between Russian-olive and co-occurring species. More research is needed on these topics to better understand the potential impacts of Russian-olive in particular plant communities under specific site conditions [96].

Ao controle: Detailed control prescriptions are beyond the scope of this review however, an understanding of what kills or damages Russian-olive may provide insight into how Russian-olive responds to injury, and therefore its potential response to fire. For more detailed management techniques and prescriptions, refer to cited references, the Russian-olive Element Stewardship Abstract, or the Weed control methods handbook.

There is limited published research addressing effective techniques to control or remove Russian-olive from invaded sites. Caplan [34] and Edelen and Crowder [59] present case studies of effective Russian-olive control in New Mexico and Washington, respectively. Tu [180] discusses a variety of control approaches for Russian-olive and provides examples of Russian-olive management on Nature Conservancy preserves. Stannard and others [163] and Deiter [49] assess a variety of suppression methods, including mechanical and chemical approaches. Important considerations for Russian-olive management include age of Russian-olive individuals, timing relative to population establishment and seed set, size of Russian-olive populations, and site conditions, including land use.

Awareness and prevention are probably the most effective tools for managing against Russian-olive invasion. In Montana, for example, invasion by Russian-olive is relatively recent and ongoing, receiving important impetus from domestic plantings [111]. Land managers should be aware of Russian-olive in the area surrounding their management unit. If Russian-olive is present, monitoring for Russian-olive seedling establishment is an important prevention practice. Discourage adjacent landowners from planting Russian-olive if possible. When Russian-olive is already established in an area, it is important to employ control measures where they will be most effective (e.g., where the native vegetation has some chance of recovering).

Control of Russian-olive is difficult once trees are mature, so early detection and rapid response are important [49,180]. Similarly, large, well-established stands of Russian-olive are nearly impossible to eradicate throughout an entire watershed, whereas small patches of Russian-olive can be adequately controlled using a variety of control methods [180]. Additionally, removal of Russian-olive should be undertaken before seeds are fully developed to prevent further spread of seeds [49]. Stevens and Ayers [165] report that heightened awareness, modest field efforts, and early detection have resulted in the control of Russian-olive and other nonnative species in the Grand Canyon.

When planning Russian-olive control, integrating several approaches will likely be necessary, depending on the size, age, and extent of the population. Mowing, cutting, burning, excavation, spraying, girdling, and bulldozing have all been used to reduce aboveground Russian-olive biomass, with varying degrees of success. Russian-olive removal can be labor-intensive and expensive, especially in the 1st year of large-scale removal [180]. Most published accounts of effective Russian-olive suppression employ chemical treatment, either alone or combined with mechanical techniques [49]. Cultural control, in the sense of managing for natives, is an important consideration.

Russian-olive control approaches and successes may differ between riparian areas on free-flowing rivers and streams, where native species have a better chance of re-establishment, and more heavily managed areas along regulated rivers. Where a dynamic disturbance regime maintains most of the active floodplain in early-successional vegetation, only a small proportion of the riparian zone will remain undisturbed long enough to become fully stocked with Russian-olive. Russian-olive is more likely to become dominant in reaches where the riparian zone in less dynamic or where the stream is more entrenched or has been artificially channelized. Consequently, the latter are the places where control measures may have a more long-term benefit [112].

Successful long-term control of Russian-olive requires that all control sites be continually monitored and follow-up treatments applied for several years, since Russian-olive sprouts following injury [180]. Lesica and Miles [112] suggest that, because most Russian-olive invasions in eastern Montana occur over a period of several decades, eradication of mature trees every 10 years or of all plants every 30 years may be effective strategies for controlling Russian-olive in those areas. Rate of spread of Russian-olive probably varies among regions, so this approach may not be effective in some areas.

Prevention: Once established, Russian-olive is difficult to control and nearly impossible to eradicate. Therefore planting of Russian-olive should be eliminated due to its tendency to persist and spread in some areas, and the inevitable costs associated with long-term control [79,81]. Prevention involves awareness and education, working with adjacent landowners and managers to remove Russian-olive from plantings and prevent additional plantings, providing alternative species for planting in areas where Russian-olive is commonly used, managing livestock grazing to minimize damage to native species, maintaining natural disturbance regimes (i.e. seasonal flooding) in riparian areas, and minimizing other human induced disturbances.

According to the USDA, NRCS [186], seed or plants of Russian-olive are available through several suppliers throughout the US, and Russian-olive is not identified as an invasive species on their list. Similarly, Carty [39] recommends 10 drought resistant trees, Russian-olive among them, for planting. While he does mention that Russian-olive is nonnative, considered invasive, and displaces native species across much of the Southwest, he also says, "as long as it's not allowed to spread, it can fill a variety of drought resistant niches." This is the type of misinformation that land managers must contend with when discouraging individuals and organizations from planting "horticulturally desirable" species such as Russian-olive [39]. As long as this type of information and these plant products are available, prevention of new introductions is difficult.

Choosing noninvasive landscape ornamentals to plant at sites near natural areas can help prevent the spread of Russian-olive [52]. In the Southern Region, Russian-olive is classified as a "Category 2" species. Therefore planting is prohibited in areas where ecological conditions would favor invasiveness and is discouraged elsewhere. They suggest consulting the forest botanist, plant ecologist, or forest noxious weed coordinator for alternative native and/or noninvasive species [184]. Stannard and others [163] provide a list of native, woody species that could be planted instead of Russian-olive in the northern Great Plains.

The potential benefits of Russian-olive to landowners for windbreaks, soil stabilization and ornamental plantings must be weighed against potential negative impacts to native communities [140]. Winter [148] recommends working with landowners and managers to remove Russian-olive from shelter belts and tree plantings, and to recommend desirable, native species for future plantings in Minnesota.

Lack of natural regeneration of native species in western riparian areas may be due, in part, to cattle grazing in the Great Plains and cattle and elk grazing in the Southwest [134]. When browsing among the multispecies patches of seedlings that germinate on bare sediments after floods, livestock feed upon the more palatable cottonwoods and willows, thus favoring dominance of tamarisk and Russian-olive. Additionally, mature Russian-olive exhibits several traits that allow it to thrive in grazed habitats, including sharp thorns, which increase in density if the tree is cut back, and large seeds that may enhance the survival of seedlings following browsing. These adaptations may contribute to spread of Russian-olive into heavily-grazed meadows and pastures ([188] and references therein). Initial Russian-olive seedling establishment may be prevented in an area with targeted grazing, granivory (using animals that would eat Russian-olive seedlings and/or seeds), or temporary inundation [96].

Water diversion, groundwater pumping [91,170], and sand and gravel mining also impact native species regeneration in the Southwest [134,170]. Hydrologic alterations have been implicated in the widespread decline of some riparian forest types and in facilitating invasions by opportunistic nonnative species ([96] and references therein). Indeed, it is likely that reduced levels of fluvial disturbance downstream from dams favor invasion of Russian-olive [95,111,112,156]. Current interest in changing river-flow management strategies to restore native fish [151] and/or native riparian forest [123] provides hope for the possible control of invasive riparian plant species via restoration of ecosystem processes (also see FEIS review on tamarisk). At present, it is unclear how prescribed flows might influence the spread or abundance of Russian-olive. Ideally, river flow regimes designed to improve regeneration and survival of native riparian forest species will also limit the success of nonnative invaders [96].

Integrated management: Integrated management includes considerations of not only killing the target weed, but also of establishing desirable species and maintaining weed-free systems over the long-term. Factors to be addressed before a management decision is made include inventory and assessment to identify the target weed and determine the size of the infestation(s) assessment of nontarget vegetation, soil types, climatic conditions, and important water resources and an evaluation of the benefits and limitations of control methods [129].

On Hempstead Plains in Uniondale, New York, where Russian-olive and other nonnative trees and shrubs are present, restoration has been attempted to re-establish the prairie matrix. Controlled burns, mowing, herbicides and reintroduction of native species have all been used, but no results were given [131].

Deiter [49] reports that the most effective means of Russian-olive control employs a combination of pulling out small individuals from moist soil using a weed wrench, and cutting larger individuals at ground level and then immediately applying a small amount of herbicide to the cut stumps. Similarly, Caplan [34] describes controlling small ( Physical/mechanical: Physical control techniques alone may be suitable for removal of Russian-olive seedlings and saplings, whereas control of larger individuals usually requires application of herbicide or removal of the stump by burning, since cut trees typically sprout from the roots and root crown [52].

Manually removing seedlings and saplings ( Fire: See the Fire Management Considerations section of this summary.

Biological: Research on biological control agents has not been undertaken for Russian-olive [49].

Herbivory does not seem to limit Russian-olive invasion in western North America to any great extent. Reviews indicate that few insects are found on Russian-olive [96,177]. Grasshoppers sometimes consume leaves of young trees as well as the fleshy part of the fruit, but rarely do serious damage [54].

Although domestic livestock browse Russian-olive, the observation that Russian-olive commonly invades grazed meadows and pastures suggests that herbivory does not prevent its survival or limit its spread. Additionally, Russian-olive seedling survival may be enhanced by large seed size, and Russian-olive adults possess several adaptations to deter grazers, including sharp thorns and leaves containing abundant defense compounds ([95] and references therein). On the other hand, granivory by generalist mammals (primarily house mice and deer mice) completely prevented germination of Russian-olive seeds outside of small mammal exclosures in study plots in Colorado [95].

There is a fair amount of literature on the susceptibility and/or immunity of Russian-olive to various diseases (e.g. [54,162]), although none have been proposed as a potential biological control agents.

Chemical: Herbicides may be effective in gaining initial control of a new invasion or a severe infestation, but are rarely a complete or long-term solution to weed management. Use of herbicides may be limited in natural areas, and it is suggested that native species large enough to provide "good structure" be present to fill the niche left by removed Russian-olives [148]. See the Weed control methods handbook for considerations on the use of herbicides in natural areas and detailed information on specific chemicals and techniques. Herbicides that have been reported as effective at controlling Russian-olive to varying degrees include glyphosate, imazapyr, triclopyr, picloram, and 2,4-D.

Foliar spraying of herbicide has provided "successful control" of Russian-olive in some cases, although long-term response is unclear. This approach may be neither feasible nor desirable in many riparian settings ([96] and references therein) due to potential effects on nontarget species, and potential for overspray or drift when applied to large stands [180]. Small seedlings can also be killed with foliar applications of a mixture of picloram and 2,4-D [148]

Cut-stump herbicide treatments can be effective if the cut surface is treated with herbicide immediately after cutting. Cuts should be made as close to the ground as possible [49,52,148,180]. In an 80-acre (32 ha) cottonwood gallery forest on the Middle Rio Grande in New Mexico, Russian-olive is the codominant tree in mixed stands. From November 1998 through February 1999, Russian-olive less than 4 inches (10 cm) in diameter were mowed, using mulching tractors, larger trees were cut with chainsaws, and triclopyr ester was applied to the cut stump within 5 minutes of cutting. A second pass was made with mulching tractors to pulverize the remaining tree waste. By summer, 1999, Russian-olive root sprouts occurred throughout the site. Numerous root sprouts were found within close proximity of larger, sprayed stumps, suggesting that the rate of triclopyr used was not effective on stumps exceeding 8 inches (20 cm) in diameter. Triclopyr was applied to leaves of Russian-olive root sprouts each year for 3 subsequent summers. Each follow-up treatment required fewer people and less time. Continued monitoring and spot treatments keeps Russian-olive under control at the site [34].

For trees that do not have to be removed or immediately taken down, exposing more than 50% of the cambium by cutting into the bark with a saw or ax close to ground level and introducing herbicides into the exposed areas is also effective [49]. Deiter [49] reports that injecting herbicide capsules around base of trunk has also been successful for controlling Russian-olive. When injecting herbicides into the cambium of a standing tree, monitoring should occur during the same year to ensure that the entire tree is affected [49].

Conversely, Edelen and Crowder [59] propose killing the top-growth with herbicide (imazapyr), followed by mechanical control of resprouts as an effective alternative to cutting and then mowing resprouts. A project to test this control approach was begun in August 1996 in south-central Washington [59], and resulted in a 90% kill rate (personal communication from Crowder as cited by [180]).

Monitoring for sprouting from cut stumps and/or roots, or seedling establishment should be done for several years following treatment [34,148,163].

Cultural: In all cases of Russian-olive control, it is important that desirable plant species be planted or otherwise cultivated to discourage re-establishment of Russian-olive. Additionally, promotion of natural processes (e.g. natural flooding regimes) may be important to manage for desirable native species. In areas where natural disturbance processes still function, removal of Russian-olive may facilitate recovery of native species. On regulated rivers and areas with intensive livestock grazing, removal or suppression of Russian-olive is likely to be only temporary, unless measures are taken to promote establishment and persistence of native species. Stannard and others [163] and Brock [20] provide lists of species useful for replacement of Russian-olive and rehabilitation of Russian-olive-infested sites.

In southwestern riparian ecosystems, managing for native species may be more successful than managing against nonnative species [171]. Elimination of the stresses, such as high salinity and reduced stream flows, that favor nonnative plants over native plants may be necessary if native plant communities are to be sustained ([188] and references therein). Stromberg and Chew [171] provide some constructive options for restoring functionality to southwestern desert riparian ecosystems. They also indicate that it is unlikely that nonnative species will be eradicated from southwestern riparian systems, but that it is also unlikely that simply removing nonnatives would allow natives to thrive where conditions no longer favor them [171]. Along these lines, Stromberg [170] discusses the ecology, threats and recovery potential of cottonwood and willow in southwestern riparian systems. See the FEIS review on tamarisk for more information on this subject.

Obedzinski and others [134] suggest that in the case of dams and diversions, we may need to accept that a return to natural, sustainable conditions may not be possible, and that we may need to design management techniques, such as timed interval flooding and artificial seedbeds, to maintain riparian function. We may also need to learn the silvics of nonnative species and utilize them according to where they best fit into riparian systems [134].


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